植物细胞培养的植物细胞培养
1． 组织培养：诱发产生愈伤组织，如果条件适宜，可培养出再生植株。用于研究植物的生长发育、分化和遗传变异；进行无性繁殖；制取代谢产物。2． 悬浮细胞培养：在愈伤组织培养技术基础上发展起来的一种培养技术。适合于进行产业化大规模细胞培养，制取植物代谢产物。3． 原生质体培养：脱壁后的植物细胞称为原生质体（protoplast），其特点是：①比较容易摄取外来的遗传物质，如DNA；②便于进行细胞融合，形成杂交细胞；③与完整细胞一样具有全能性，仍可产生细胞壁，经诱导分化成完整植株：4． 单倍体培养：通过花药或花粉培养可获得单倍体植株，经人为加倍后可得到完全纯合的个体。
单细胞的培养方法有哪些
单细胞培养常见模型： ①在培养碟中原位单细胞微吸吮捕获、沉积分选培养模型传统的荧光活化细胞分选方法（FACS）采用流式细胞术用来分选细胞，是分子基础分选中普遍使用的方法。这种方法只能检测具有荧光活性的细胞，不但细胞存活率低、纯度低，而且极易破坏细胞组织。微吸吮单细胞分选培养模型是与倒置显微镜配合使用的，用于细胞筛选、提取、沉积的。 ◇ 可直接从培养皿中进行细胞分选 ◇ 分离粘结活细胞的细胞亚群，分离荧光或者冷光标记 ◇ 无标记的和荧光的细胞都可通过软件进行自动识别 ◇ 可确保细胞分离后活力，并且可培养 ◇ 分选荧光分子探针标记的特定细胞 ◇ 单细胞收集进行进一步培养、克隆，RNA 或者蛋白质制备 ◇ 免疫制备，进行目标细胞分类 ◇ 可对各种粘结细胞进行分类 ◇ 细胞筛选前的细胞培养 ◇ 一般的分选过程只需几分钟就可完成 ◇ 使用安装在显微镜上的荧光滤片可实现多通道监测 ◇ 分选速度为1Cell/秒每一个循环可筛选1~1000个细胞 ②单细胞培养分析跟踪板模型 ③使用把显微镜升级改造为纳米激光镊捕获操纵单细胞模型这种模型很简单，在已有显微镜上加上纳米激光器或芯片就可以了 ④使用活态单细胞激光拉曼光谱无损测定鉴别模型活态单细胞激光拉曼光谱无损测定鉴别模式可在无任何标记情况下对活细胞进行三维扫描测定其分子分布，更具优越性。活态单细胞激光拉曼光谱无损测定鉴别模式为医师，药师和生物学家提供了利用拉曼光谱的便利的方式，不仅可以识别各种基团，还可以对化合物进行高精确度分析，且对活细胞不需要使用生化标记物，荧光标记物或者抗体，对活细胞绝对安全。
